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大多數(shù)情況下,工程核酸酶的靶向效率在1%~30%之間。盡管與通過同源重組的傳統(tǒng)基因靶向技術相比,這種效率相當明顯,但分離攜帶所需突變的細胞的步驟仍然需要廣泛的篩選。
PNA Bio開發(fā)的敲除細胞富集系統(tǒng)就是為了克服這些限制。使用替代報告子可以選擇性富集在靶位點獲得EN介導突變的細胞。
替代報告基因由編碼通過EN靶向序列連接的兩種熒光蛋白(紅色和綠色)的基因組成。在沒有EN表達的情況下,它們被設計為表達紅色而不是綠色熒光蛋白,因為它被放置在框架外。ENs表達后,可誘導GFP前靶位點的雙鏈斷裂,導致移碼突變和GFP表達。綠色GFP的表達嚴格依賴于特異性識別報告構建體中靶序列的ENs的核酸酶活性的存在。
PNA Bio的代理報告系統(tǒng)是一個很好的工具,可以通過基因編輯事件來可視化和豐富細胞。使用替代報告子系統(tǒng),可以將發(fā)現(xiàn)敲除細胞的頻率提高3~20倍。
艾美捷PNA Bio-替代報告系統(tǒng):
GFP系統(tǒng):mRFP(組成性表達)+ EN靶向位點 + GFP1(錯位)+ GFP2(錯位)
MACS系統(tǒng):mRFP(組成性表達)+ EN靶向位點 + GFP(錯位)+ 跨膜蛋白(錯位)
HygR系統(tǒng):mRFP(組成性表達)+ EN靶向位點 + GFP(錯位)+ 潮霉素抗性基因(錯位)
時間線:2周

左圖:將不同量的Cas9蛋白與500ngsgRNA孵育。通過脂質體胺將RNP復合物轉染到NIH3T3細胞中。24小時后,從每種條件下制備DNA用錯配敏感核酸酶法(T7E1)檢測Cas9蛋白和sgRNA的活性。
右圖:對于體內成像,通過以下方法將500ng的Cas9蛋白和500ng的sgRNA轉染到NIH3T3細胞lipofectamine。24小時后,通過共焦顯微鏡對細胞進行再成像顯微鏡。
Cy3-Cas9蛋白的活性通過電穿孔進入細胞,然后進行T7E1測定來確認。熒光通過共聚焦顯微鏡確認。
PNA Bio-Cas9共轉染/選擇載體:
CV02:Cas9、潮霉素抗性基因(Hygro R)和GFP(由CMV啟動子驅動)
CV03:Cas9、紅色熒光蛋白(RFP)和嘌呤霉素抗性基因(Puro R)(由CMV啟動子驅動)
CV12:Cas9、潮霉素抗性基因(Hygro R)和GFP(由EF1a啟動子驅動)
CV13:Cas9、紅色熒光蛋白(RFP)和嘌呤霉素抗性基因(Puro R)(由EF1a啟動子驅動)
文獻參考:
1.Surrogate reporters for enrichment of cells withnuclease-induced mutations. KimH et al. (2011) Nat Meth 8:941-943.
2.Magnetic separation and antibiotics selection enable enrichmentof cells with ZFN/TALEN-induced mutations. Kim H et al. (2013) PLosOne 8(2):e56476.
3.Surrogate reporter-basedenrichment of cells containing RNA-guided Cas9 nuclease-induced mutations. Ramakrishna S et al. (2014) Nat Comm 5: 3378
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