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DPP4抑制劑篩選試劑盒,高效穩(wěn)定篩選DPP4抑制劑

發(fā)布者:艾美捷科技    發(fā)布時間:2024-05-29     
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DPPIV藥物篩選試劑盒(DPPIV Drug Discovery Kit)是用來篩選DPPIV (DPP4;CD26)抑制劑的試劑盒。二肽基肽酶VI(DPPIV)是一種脯氨酸蛋白水解酶,可切除脯氨酸之后的蛋白殘基。DPPIV參與免疫調(diào)節(jié)。信號轉(zhuǎn)導及細胞凋亡等許多生物過程。更為重要的是DPPIV抑制劑是研制出來的一種治療II型糖尿病的新藥,應用:比色法檢測,熒光顯微鏡,高通量篩選。

 

艾美捷Biogradetech-DPP4抑制劑篩選試劑盒(BGT-KAT-100)提供了一種方便的基于熒光的方法來篩選DPP(Ⅳ)抑制劑。該測定使用熒光底物Gly-Pro氨基甲基香豆素(AMC)來測量DPP(IV)的活性。DPP對肽鍵的切割釋放出游離的AMC基團,產(chǎn)生的熒光可以使用350-360nm的激發(fā)波長和450-465nm的發(fā)射波長進行分析。

 

移液總結(jié):

DPP4抑制劑篩選試劑盒


基本信息:

1、所有孔的最終檢測體積為100微升。

2、在檢測中使用稀釋后的檢測緩沖液。

3、除了酶之外,所有試劑在開始檢測前必須平衡至室溫。

4、沒有必要一次使用板上的所有孔。

5、建議以三重復進行樣本檢測,但是否這樣做取決于用戶的判斷。

6、檢測在37°C下進行。

7、如果不知道適當?shù)囊种苿舛龋赡苄枰趲讉€稀釋度下進行檢測。可以進行每個抑制劑的稀釋系列,以確定IC50值。

8、三十個抑制劑樣本可以進行三重復檢測,或者四十五個樣本進行雙重復檢測。

9、使用激發(fā)波長為350-360納米和發(fā)射波長為450-465納米的熒光監(jiān)測。

 

執(zhí)行檢測:

1.初始活性孔 - 在三個孔中分別加入30微升稀釋的檢測緩沖液、10微升稀釋的DPP (IV)和10微升溶劑(用于溶解抑制劑的相同溶劑)。

2.背景孔 - 在三個孔中分別加入40微升稀釋的檢測緩沖液和10微升溶劑(用于溶解抑制劑的相同溶劑)。

3.西他列汀陽性對照抑制劑孔 - 在三個孔中分別加入30微升稀釋的檢測緩沖液、10微升稀釋的DPP和10微升西他列汀陽性對照抑制劑。

4.抑制劑孔 - 在三個孔中分別加入30微升稀釋的檢測緩沖液、10微升稀釋的DPP (IV)和10微升抑制劑。注意:抑制劑可以溶解在檢測緩沖液或二甲亞砜中,并且應以10微升的最終體積加入到檢測中。乙醇和甲醇會大幅降低酶活性,因此不推薦用于溶解抑制劑。如果完全不知道需要抑制DPP (IV)的適當濃度,我們建議檢測該化合物的幾個濃度。

5.啟動反應 - 向所有使用的孔中各加入50微升稀釋的底物溶液。

6.蓋板孵育 - 用板蓋蓋住板子,并在37°C下孵育30分鐘。

7. 讀取熒光 - 去掉板蓋,并使用激發(fā)波長為350-360納米和發(fā)射波長為450-465納米的熒光讀取。可能需要調(diào)整儀器的增益設(shè)置,以便測量所有樣本。

*為了確定反應速率和表觀IC50值,我們建議以動力學方式讀取樣本,在30分鐘檢測讀取時間內(nèi)收集盡可能多的時間點。基于動力學曲線的線性部分確定初始速率。可以通過用熒光代替,按照以下所示進行計算。

% Inhibition =【{Inial Acvity - Inhibitor}/ Inial Acvity 】x 100

 

DPP4抑制劑篩選試劑盒文獻參考:

1. Morimoto, C., Lord, C.I., Zhang, C., et al. Role of CD26/dipeptidyl peptidaseIV in human immunodeficiency virus type 1 infection and apoptosis. Proc.Nat Acad. Sci. USA 91, 9960-9964 (1994).

2. Fleischer, B. CD26: A surface protease involved in T-cell activation.Immunology Today 15(4), 180-184 (1994).

3. Heike, M., M?bius, U., Knuth, A., et al. Tissue distribution of the T cellactivation antigen Ta1. Serological, immunohistochemical and biochemicalinvestigations. Clin. Exp. Immunol. 74, 431-434 (1988).

4. Durinx, C., Lambeir, A.-M., Bosmans, E., et al. Molecular characterization ofdipeptidyl peptidase activity in serum. Soluble CD26/dipeptidyl peptidaseIV is responsible for the release of X-Pro dipeptides. Eur. J. Biochem 267,5608-5613 (2000).

5. Lambeir, A.-M., Pereira, J.F.D., Chacón, P. , et al. A prediction of DPP IV/CD26 domain structure from a physico-chemical investigation of dipeptidylpeptidase IV (CD26) from human seminal plasma. Biochim. Biophys. Acta1340, 215-226 (1997).

6. Mentlein, R. Dipeptidyl-peptidase IV (CD26)-role in the inactivation ofregulatory peptides. Regul. Pept. 85, 9-24 (1999).

7. Langley, A.K., Suffoletta, T.J., and Jennings, H.R. Dipeptidyl peptidaseIV inhibitors and the incretin system in type 2 Diabetes Mellitus.Pharmacotherapy 27, 1163-1180 (2007).

8. Doupis, J. and Veves, A. DPP4 inhibitors: A new approach in diabetestreatment. Advances in Therapy 25(7), 627-643 (2008).

9. Kikkawa, F., Kajiyama, H., Shibata, K., et al. Dipeptidyl peptidase IV in tumorprogression. Biochim. Biophys. Acta 1751, 45-51 (2005).

10. Havre, P.A., Abe, M., Urasaki, Y., et al. The role of CD26/dipeptidyl peptidaseIV in cancer. Frontiers in Bioscience 13, 1634-1645 (2008).

11. Zhang, J.-H., Chung, T.D.Y., and Oldenburg, K.R. A simple statisticalparameter for use in evaluation and validation of high throughput screeningassays. J. Biomol. Screen. 4(2), 67-73 (1999).


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